注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

测定意义：

GSH/GSSG是细胞内最重要的氧化还原对之一。因此，测定细胞内GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值，能够很好地反映细胞所处的氧化还原状态，也是谷胱甘肽氧化还原循环的主要指标之一。

测定原理：

利用2-VP法测GSSG含量。

自备仪器和用品：

可见分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1mL玻璃比色皿和蒸馏水。

试剂组成和配置：

试剂一：液体50mL×1瓶，4℃保存。

试剂二：液体300μL×1支，4℃保存。

试剂三：液体50mL×1瓶，4℃保存。

试剂四：液体6mL×1瓶，4℃保存。

试剂五： 液体30μL×1瓶，-20℃保存。临用前加入0.6 mL试剂三稀释，4℃保存。

试剂六：粉剂×1瓶，4℃保存。临用前加入40 mL试剂三溶解，现配现用。

粗酶液提取：

1. 组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清液（如上清不清澈，再离心3min）待测。

2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；8000g 4℃离心10min，取上清液（如上清不清澈，再离心3min）的蒸馏水混匀待测。

3. 血清等液体：直接测定。

测定操作:

1. 分光光度计预热30 min，调节波长到412 nm，蒸馏水调零。

2. 试剂三置于25℃（一般物种）或者37℃（哺乳动物）水浴中保温30min。

3. 测定管：取1 mL EP管，加入100 μ L上清液，5μ L试剂二，盖紧后混匀，置于37℃水浴30min；依次加入100 μ L试剂四，10 μ L试剂五，700 μ L试剂六，迅速混匀后，立即测定30 s和150 s光吸收A1和A2，计算ΔA=A2-A1。

GSSG含量计算公式:

1、标准条件下测定的回归方程为y=0.0276x-0.0011；x为标准品浓度（nmol/mL），y为吸光值(ΔA)。

2、 按蛋白浓度计算

GSSG（nmol/mg prot）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V样÷(V样×Cpr)

=36.23×(ΔA+0.0011)÷Cpr

3、按样本鲜重计算

GSSG（nmol /g 鲜重）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V样÷(V样÷V样总×W)

=36.23×(ΔA+0.0011)÷W

4、按细胞数量计算

GSSG（nmol/104 cell）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V样÷(V样÷V样总×细胞数量)

=36.23×(ΔA+0.0011)÷细胞数量

5、按照液体体积计算

GSSG（nmol/mL）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V样÷V样

=36.23×(ΔA+0.0011)

V样：反应中加入样本体积，0.1mL；V样总：加入提取液体积， 1mL；W：样品质量，g，Cpr：样本蛋白浓度（mg/mL）

注意事项：

提取过程中去掉蛋白质，所以提取液不能用于测定蛋白含量。

临用前配制的试剂配好后4℃保存，2天内使用完毕。

最低检出限为0.1μmol/L。

反应温度.严格来说，为保证重复性，应在25℃下进行反应。

反应时间需精确控制，否则会影响反应速率计算，产生较大误差。

样品中的GSSG浓度尽可能低一些，否则反应速率太大，没法控制，所以稀释倍数要尽量大些。