不同类型抗体储存时注意要避免污染或损失

保存温度和条件

很多抗体的最佳保存条件是分装成小包装冻存于 -20°C 或 -80°C。分装能使冻融引起的损失减到最小，同时可避免多次在一个 管内取样而由枪头引入的污染。分装冻存的抗体，融解一次后剩余抗体应保存于 4°C。收到抗体后，应 10,000 x g 离心 20 秒， 使管口螺纹内的抗体溶液全部离心至管底，用低蛋白吸附性的微量离心管分装。分装量的多少取决于每次试验的使用量。分装量 不能少于 10μl；分装量越少，由于蒸发和吸附于管内壁而引起的损失会越大。

除了腹水液含蛋白酶应立即冻存外，大多数抗体接收后可在 4°C 保存一至两周，随后可冻存以长期保存。同样，应按照说明书 推荐的条件进行保存。

免责声明和其他特殊情况

酶联抗体 ——不应冻存，4°C 可保证稳定。冻融会降低酶的活性，同时影响抗体的吸附能力。

偶联标记的抗体 ——无论是标记的荧光染料、酶还是生物素，都应保存于深色的管内并包裹上铝箔。如果暴露在光线下可能会减弱 偶联标记物的活性。荧光标记物尤其容易受到光漂白作用，整个实验过程中均应避光。

免疫球蛋白 G3 ——同种型抗体冻融后易形成聚合物，因此应一直保存于 4°C。

用叠氮化钠防止污染

为防止微生物污染，在抗体溶液中应加入叠氮化钠，终浓度为 0.02%（质量百分比）。很多启研的抗体已经包含了 0.02-0.05% 的叠氮化纳，在说明书的“保存缓冲液”部分会有描述。

什么时候不能用叠氮化纳

如果用抗体标记活细胞，或用于体内实验，确保所用制剂中不含叠氮化钠。这种抗生素对大多数有机体都有毒性：会阻断细胞色 素电子传递系统的信号。

叠氮化钠会干扰胺基的偶联标记，应在进行标记之前将其除去。标记后抗体可保存于叠氮化纳，也可用不含胺基的硫柳汞替代。

叠氮化钠可用透析或凝胶过滤法从抗体溶液中除去。免疫球蛋白 G 的分子量是 150,000 kDa（免疫球蛋白 M 的分子量是 600,000 kDa），叠氮化钠的分子量是 65 道尔顿。使用 14,000 kDa 的微量透析装置，随着叠氮化钠的扩散，抗体将保留。将带有烧杯的 磁力搅拌器置于 4°C 搅拌透析装置 6 小时 , 每毫升抗体溶液要用至少 1 升的磷酸盐缓冲液。更换 2 次磷酸盐缓冲液，每次均搅拌 至少 6 小时。如果可以的话，所有材料 均要求无菌，所有溶液都应无菌配制。

冻存 / 复苏的损失

反复冻融可使抗体变性，使其形成聚合物而降低了抗体结合能力。

大多数抗体在 -20°C 保存就足够了，没有必要置于 -80°C 保存。千万不要使用无霜的冰箱。反复冻融能减少霜的形成，但这正 是应该避免的。同理，抗体应该放置于冰箱中温度变化最小的部位，如应放置于冰箱格里，而不应放置于冰箱门上。

一些研究者为防止反复冻融的损失，在抗体中加入终浓度为 50% 的甘油作为抗冻剂。甘油可以将冰点降低至 -20°C 以下。很多 抗体都可以这样做，本公司提供的抗体只有一小部分测试了这种保存条件下的稳定性，我们只保证那些按照说明书推荐条件储存 的抗体有活性。由于 -80°C 低于甘油的冰点，所以加了甘油的溶液不应保存于 -80°C。注意，甘油可能会被细菌污染。如果要 加入甘油或其他防冻剂，应注意无菌处理。

稀释至工作浓度的抗体最好不要在 4°C 保存超过一天时间。通常蛋白质在较高浓度保存时不易发生降解，理想浓度为 1mg/ml 或更高，因为抗体溶液中包含了如牛血清白蛋白等蛋白质稳定剂。加入的蛋白可吸附于管壁从而使抗体的损失减到最小。对用于 聚合的抗体，不应加入蛋白稳定剂，因为其可能会与抗体竞争而降低抗体的聚合活性。